شماره مدرك :
20449
شماره راهنما :
2369 دكتري
پديد آورنده :
گلي، صادق
عنوان :

تشخيص و جداسازي سلولهاي توموري گردشي در خون از طريق سيستم اسپايتگ و اسپايكچر با استفاده از آدنوويروس مهندسي شده و ميكرودانه مغناظيسي

مقطع تحصيلي :
دكتري
گرايش تحصيلي :
بيومتريال
محل تحصيل :
اصفهان : دانشگاه صنعتي اصفهان
سال دفاع :
1404
صفحه شمار :
شانزده، 100ص. : مصور، جدول
توصيفگر ها :
سلولهاي توموري گردشي , ويروسهاي انكلوتيك , آدنوويروس , اسپايتگ , اسپايكچر , ميكرودانه مغناطيسي , آگاروز
تاريخ ورود اطلاعات :
1404/06/22
كتابنامه :
كتابنامه
رشته تحصيلي :
مهندسي پزشكي (بيومواد)
دانشكده :
مهندسي مواد
تاريخ ويرايش اطلاعات :
1404/06/22
كد ايرانداك :
23127501
چكيده فارسي :
سلولهاي توموري گردشي (CTCs) از جمله زيست نشانگرهاي كليدي در تشخيص، پيش آگهي و پايش برخط درمان سرطان به شمار ميروند. با اين حال، كميابي اين سلولها و وابستگي روشهاي رايج به نشانگرهاي سطحي، كارايي جداسازي و شناسايي آنها را محدود ميسازد. ويروسهاي آدنو با قابليت تكثير انتخابي(crADs) امكان هدفگيري انتخابي سلولهاي توموري را فراهم ميكنند، اما كاربرد آنها تاكنون عمدتاً به شناسايي بر پايه ي بيان پروتئين فلئورسنت بدون امكان جداسازي مؤثر سلولهاي زنده محدود بوده است. در اين پژوهش، سامانه اي مبتني بر ويروس آدنو مهندسي شده با فناوري اسپايتگ/اسپايكچر طراحي شد كه با استفاده از ميكرودانه هاي مغناطيسي پوشيده شده با پروتئين اسپايكچر، امكان شناسايي و جداسازي سلولهاي توموري را بدون وابستگي به نشانگرهاي سطحي فراهم ميسازد. ويروس مهندسي شده (CR-Ad5-S.T-GFP) بهطور انتخابي در سلولهاي توموري داراي فعاليت تلومرازي بالا تكثير يافته و بهصورت همزمان ژنهاي پروتئين فلئورسنت سبز (GFP) و پپتيد اسپايتگ را تحت پروموترهاي مستقل بيان ميكند. با بهره گيري از برهمكنش اختصاصي بين اسپايتگ و اسپايكچر، اين سامانه قادر به جداسازي سلولهاي توموري بدون نياز به نشانگرهاي سطحي بوده است. بدينمنظور، سلولهاي A-549 ، Ca Ski و MCF-7 در نسبتهاي مختلف در يك ميليون جمعيت سلولهاي تكهستهاي خون محيطي(PBMCs) پخش گرده و توسط فلوسايتومتري مورد تشخيص قرار گرفتند. همچنين جمعيت سلولهاي A-549 در نسبتهاي مختلف در جمعيت يك ميليوني سلولهاي خوني پخش گشته و پس از جداسازي با ميكرودانههاي مغناطيسي پوشيده از اسپايكچر مورد مطالعه قرار گرفتند. نتايج حاصل توانايي سيستم ارائه شده را براي تشخيص و جداسازي 80 % سلولهاي توموري در نسبت 1 به 10٬000 داشتهاند. همچنين شاخص ميزان حداقل تشخيص 35 سلول گزارش گرديد. همچنين با استفاده از اين روش، امكان جداسازي سلولهاي به دام افتاده از ميكرودانه ها و كشت مجدد آنها مورد بررسي و تاييد قرار گرفت كه اين امر، پتانسيل آن را براي كاربردهاي پسآزمايشگاهي مانند تعيين پروفايل مولكولي و بررسي حساسيت دارويي نشان ميدهد. اين روش با تلفيق هدفگيري اختصاصي تومور از طريق ويروسهاي crAD و جداسازي سلولهاي زنده بدون نشانگر، رويكرد نوآورانه اي در شناسايي CTC ها ارائه ميدهد و با سازگاري با سامانه هاي ميكروسيالي، ابزاري نويدبخش براي پايش تومور و درمانهاي شخصي سازي شده سرطان محسوب ميشود.
چكيده انگليسي :
Circulating tumor cells (CTCs) are critical biomarkers for cancer diagnosis, prognosis, an‎d therapy monitoring, but their rarity an‎d reliance on surface markers limit detection an‎d isolation. While conditionally replicative adenoviruses (crADs) enable tumor-selec‎tive targeting, their use has been limited to fluorescence-based detection without robust isolation of viable cells. To overcome this, we developed a crAD-based platform integrating SpyTag/SpyCatcher technology with SpyCatcher-decorated magnetic microbeads for marker-independent CTC detection an‎d isolation. The engineered adenovirus (CR-Ad5-ST-GFP) selec‎tively replicates in telomerase-positive tumor cells, expressing green fluorescent protein (GFP) an‎d SpyTag under independent promoters. By leveraging the SpyTag/SpyCatcher interaction, our platform isolates CTCs without relying on surface markers, addressing epithelial-to-mesenchymal transition (EMT) an‎d phenotype variations. In proof-of-concept experiments, A-549 an‎d Ca Ski cells spiked into peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) at 1:10,000 were detected an‎d isolated with over 80% efficiency. The isolated cells remained viable an‎d were successfully re-cultured, demonstrating their potential for downstream applications such as molecular profiling an‎d drug sensitivity testing. This method advances crAD-based approaches by combining tumor-selec‎tive viral targeting with marker-independent, viable CTC isolation. Its compatibility with microfluidic systems makes it a promising tool for tumor monitoring an‎d personalized cancer treatment.
استاد راهنما :
مهشيد خرازيهاي اصفهاني , شقايق حق جوي جوانمرد , كيهان آزادمنش
استاد داور :
حسين خان احمد , محمدعلي مظلومي , شيدا لباف
لينک به اين مدرک :

بازگشت