شماره مدرك :
19704
شماره راهنما :
17023
پديد آورنده :
اثني عشري، مهرو
عنوان :

ارزيابي مقاومت به حشره‌كش‌هاي كتوانول در جمعيت‌‌هاي ايراني سفيدبالك پنبه Bemisia tabaci

مقطع تحصيلي :
كارشناسي ارشد
گرايش تحصيلي :
حشره شناسي
محل تحصيل :
اصفهان : دانشگاه صنعتي اصفهان
سال دفاع :
1403
صفحه شمار :
هشت، 68ص. : مصور، جدول، نمودار
توصيفگر ها :
اسپيروتترامات , اسپيرومسيفن , اسپيروپيديون , زيست سنجي , موتاسيون A2083V , فعاليت آنزيمي , مقاومت تقاطعي
تاريخ ورود اطلاعات :
1403/07/02
كتابنامه :
كتابنامه
رشته تحصيلي :
مهندسي كشاورزي گياهپزشكي
دانشكده :
مهندسي كشاورزي
تاريخ ويرايش اطلاعات :
1403/07/03
كد ايرانداك :
23066869
چكيده فارسي :
عسلك پنبه (Bemisia tabaci) آفت مكنده‌اي است، كه با تغذيه از گياهان و انتقال ويروس‌هاي گياهي متعدد باعث خسارت به گياهان ميزبان مي‌شود. عسلك پنبه شامل يك مجموعه گونه‌اي است كه حشرات اين مجموعه را با عنوان بيوتيپ معرفي مي‌كنند، كه شباهت مورفولوژيكي و تفاوت ژنتيكي دارند. مهاجم‌ترين و معروف‌ترين بيوتيپ‌ها، بيوتيپ B و Q هستند كه امروزه با نام خاورميانه_آسياي صغير (MEAM1) و مديترانه‌اي (MED) شناخته مي‌شوند. كتوانول‌ها، مشتقات تترونيك و تتراميك اسيد، براي كنترل آفات مكنده استفاده مي‌شوند. براساس نحوه عملكرد به عنوان گروه 23 جدولIRAC طبقه بندي مي‌شوند. كتوانول‌ها به عنوان بازدارنده استيل كوآ كربوكسيلاز (ACC)، يك آنزيم كليدي براي بيوسنتز ليپيد، عمل مي‌كنند. مكانيسم‌هاي مقاومت در گونه‌هاي مختلف بندپايان به كتوانول‌ها با جهش در دامنه CT ژن استيل‌كوآنزيم‌آ‌كربوكسيلاز و افزايش سم‌زدايي با بيان بيش از حد سيتوكروم مونواكسيژناز P450، كربوكسيل استرازها و يورودين دي فسفات گليكوزيل ترانسفراز مرتبط است. هدف از اين مطالعه بررسي مقاومت جمعيت‌هاي عسلك پنبه به كتوانول‌ها بود. براي اين منظور، پنج جمعيت از مناطق مختلف اصفهان، يزد و بندرعباس جمع‌آوري شد و ارزيابي مقاومت جمعيت‌ها با روش زيست سنجي با استفاده از روش غوطه‌وري برگ تعيين شد. بالاترين نرخ مقاومت نسبت به اسپيروتترامات در جمعيت دهاقان، با نسبت 55 برابري، بالاترين نرخ مقاومت نسبت به اسپيرومسيفن در جمعيت شهرسين، با نسبت 28 برابري و نرخ مقاومت 5 برابري نسبت به اسپيروپيديون در جمعيت دهاقان گزارش شد. جهت بررسي نقش آنزيم‌هاي سم‌زدا در بروز مقاومت، سنجش سينرژيستي با سه سينرژيست، پيپرونيل بوتاكسيد (PBO)، تري فنيل فسفات (TPP) و دي اتيل مالئات (DEM)، مورد بررسي قرار گرفت. در جمعيت مقاوم تنها دو سينرژيست PBO و TPP باعث افزايش سميت اسپيروتترامات در جمعيت‌هاي عسلك پنبه گرديد. همچنين ميزان فعاليت آنزيم‌هاي سم‌زدا، سيتوكروم منواكسيژناز P450، استرازها و گلوتاتيون S-ترانسفرازها (GST) تعيين شد. نتايج نشان داد كه فعاليت P450 و استرازها به ترتيب در جمعيت‌هاي مقاوم بيشتر است. مقاومت به اسپيروترامات نيز با استفاده از تكنيك‌هاي توالي‌يابي تشخيص داده شد. با تعيين توالي بخشي از دامنه CT استيل‌كوآنزيم‌آكربوكسيلاز، موتاسيون A2083V، جايگزيني اسيد آمينه والين به جاي آلانين (GTC/GCC)، در جمعيت‌هاي دهاقان و شهرسين به طور كامل اثبات شد. با ارزيابي مقاومت تقاطعي، سطوح بالايي از مقاومت به اسپيرومسيفن و سطح پاييني از مقاومت به اسپيروپيديون را در جمعيت‌هاي مقاوم به اسپيروتترامات نشان داد. به دنبال ارزيابي مقاومت جمعيت¬هاي عسلك پنبه به تركيبات كتوانول، نقش مقاومت متابوليكي و جهش در محل هدف در مقاومت مشخص گرديد.
چكيده انگليسي :
Sweet potato whitefly (Bemisia tabaci) are classified in the order Hemiptera, family Aleyrodidae. B. tabaci is a sucking pest which causes damage to host plants by feeding and transmission of numerous plant viruses. The Middle East–Asia Minor 1 (MEAM1) and Mediterranean (MED) complexes (previously known as B biotype and Q biotype) are considered the most invasive species with a broad host range of plants. Ketoenols, tetronic and tetramic acid derivates, are used for sucking pest control. They are classified as group 23 of the IRAC MoA classification. They are act as inhibitors of acetyl-CoA carboxylase (ACC), a key enzyme for lipid biosynthesis across taxa. The mechanisms of resistance in different arthropod species to ketoenols have been linked to mutations in the ACC CT domain and enhanced detoxification by overexpression of cytochrome P450 monooxygenase,glutathione S-transferase and uridine diphosphate glycosyltransferase genes. The aim of this study was to eva‎luate the resistance in several B. tabaci populations to ketoenols. For this purpose, five B. tabaci populations populations were collected from different regions of Isfahan, Yazd, Bandarabas province, and the sensitivity of the populations to spirotetramat was determined by toxicity bioassays using a leaf dip method. The LC50 values of populations were estimated between 14.12 (Bandarabas) and 785.56 (Dehaghan) mg active ingredient (a.i.) L−1. The population of Dehaghan had a resistance ratio of 55-fold. To elucidate the resistance mechanisms, the effects of pretreatment with three synergists, pipronil butoxide (PBO), triphenilphosphat (TPP) and di ethyl maleat (DEM), were investigated. In the susceptible and resistant populations. To investigate the role of detoxification enzymes, also, the activity of cytochrome P450 monooxygenases, esterases and glutathione S-transferases (GST) were determined. The results showed a higher P450 activity and esterases in the resistant populations respectively. Resistance to spirotetramat was also detected by using sequencing techniques. By partial sequencing of the acetyl-CoA carboxylase and based on the amino acid sequences and the resulting chromatogram, the A2083V substitution, substitution of the amino acid valin instead of alanin (GTC/GCC), was observed in the 2083 part of CT domain of the acetyl-CoA carboxylase in two resistance population (Dehaghan and Sin). The cross-resistance levels in these populations were also assessed against spiropidion and spiromesife. Spirotetramat resistant population of Dehaghan exhibited a high cross resistance to spiromesifen and low level cross resistance to spiropidion. Distinct cross resistance levels have been found among the ketoenol compounds.
استاد راهنما :
جهانگير خواجه علي , نفيسه پورجواد
استاد مشاور :
مجيد طالبي
استاد داور :
روح الله عباسي , لادن طلايي
لينک به اين مدرک :

بازگشت